㈠ 流式细胞仪图怎么看
二维点图以双参数显示结果，每个点表示一个或多个细胞。图5-6为阴性对照图，用于设定阴性对照边界，全图划分为四个象限，以区分阴性细胞、单阳性细胞以及双阳性细胞。左下象限（LL）为双阴性细胞，左上象限（UL）为Y轴阳性细胞（CD19 PE），左下象限（LR）为X轴阳性细胞（CD3 FITC），右上象限（UR）为双阳性细胞（CD19+/CD3+）。
㈡ 请教,流式细胞图应该怎么看
从左到右，从上到下，第一个图横轴是FSC，纵轴是SSC，一个前向角，一个侧向角，具体定义就不说了，这两个指标主要用于判断细胞的大小。利用这个图可以去除细胞碎片以及粘连在一起的细胞，只挑单个细胞进行后续分析。
你可以继续问。
㈢ 如何看流式细胞图
流式的图一般是两种形式。一是柱状图，X轴是信号强度，Y轴是计数。数据通常显示为峰值。比如阴性或者信号弱的峰在左侧，而阳性或者信号强的就位于右侧。柱状图一次只能显示一个通道信号，通常用来判断阳性，阴性的区别或者单个通道信号在不同样本间的变化。
另外一种形式是散点图。就是把两个通道的信号同时显示在图上。优点是由于同时显示两个通道的信号，可以提供比柱状图更多的信息。
多色流式样本检测一般都是通过上下级关系的图来显示不同的图。比如在上一级的图中先针对某个细胞群画了个门，然后该门内所有细胞又可以用其他通道的信号显示到另外一个图上进行进一步的分析。
㈣ 流式图四个象限怎么看凋亡
流式图四个象限看凋亡：在二维散点图上，PI 和 annexin V 分别是X和Y轴。一般认为PI单染的细胞是已经死亡的细胞，annexin V 单染的细胞是凋亡早期的细胞，而双染是凋亡中期的。
需要在散点图上先画出4个象限，位置根据无染色的阴性细胞先定出左下象限。Annexin V是一种检测细胞凋亡的试剂，在正常细胞中，磷脂酰丝氨酸只分布在细胞膜脂质双层的内侧，细胞发生凋亡早期，膜磷脂酰丝氨酸（PS）由脂膜内侧翻向外侧。
相关分析
使用流式细胞仪正确分析Annexin V-FITC/PI双染的细胞前要求仪器的荧光补偿来去除两种染料激发光之间的叠加。因为荧光补偿设置与PMT的电压直接相关，所以不同仪器之间的补偿不同。建议在实验开始阶段分析经Annexin V、PI分别单染的细胞来调整荧光补偿去除光谱重叠。根据未处理细胞空白对照和经Annexin V、PI分别细胞染色后的单染对照的分析设定十字门的位置。
㈤ 怎么看annexin v-fitc细胞流式测凋亡图片
在二维散点图上，PI 和 annexin V 分别是X和Y轴。一般认为PI单染的细胞是已经死亡的细胞，annexin V 单染的细胞是凋亡早期的细胞，而双染是凋亡中期的。
需要在散点图上先画出4个象限，位置根据无染色的阴性细胞先定出左下象限。
Annexin V是一种检测细胞凋亡的试剂，在正常细胞中，磷脂酰丝氨酸只分布在细胞膜脂质双层的内侧，细胞发生凋亡早期，膜磷脂酰丝氨酸（PS）由脂膜内侧翻向外侧。
(5)流式细胞凋亡图片怎么看扩展阅读：
用标记了FITC的AnnexinⅤ作为荧光探针，利用流式细胞仪或荧光显微镜可检测细胞凋亡的发生，正常细胞和早期凋亡细胞的细胞膜是完整的。
检测annexin V-FITC单染的细胞并检查FL1-FL2（或FL3）散点图，保证在左上和右上象限内没有颗粒。如果有颗粒出现在上端象限则说明有荧光渗漏；此时FL1的荧光被FL2 （或FL3）PMT检测到了。
为了纠正这种现象，增加FL1漏到FL2（或FL3）荧光的补偿%（这可能在1-5%之间）。如果这个调节没有有效地去除FL2的阳性信号，此时要降低FL2（或FL3） PMT的电压。
㈥ 如何分析流式细胞结果分析凋亡二维点图
流式细胞仪（Flow cytometer ）是对细胞进行自动分析和分选的装置。它可以快速测量、存贮、显示悬浮在液体中的分散细胞的一系列重要的生物物理、生物化学方面的特征参量，并可以根据预选的参量范围把指定的细胞亚群从中分选出来。多数流式细胞计是一种零分辨率的仪器，它只能测量一个细胞的诸如总核酸量，总蛋白量等指标，而不能鉴别和测出某一特定部位的核酸或蛋白的多少。也就是说，它的细节 分辨率为零。
㈦ 急求流式细胞仪检测细胞周期和细胞凋亡的结果图6张！
这没什么好参考价值的啊，你做不同的细胞出来的图片差异很大的，我做过心脏和肝脏的，就差别很大。而且你做的染色和处理也是前提。一般凋亡小体是能看出来的，就是细胞周围有一些很透明的小泡。这是张网络上的图。做流式细胞的单位并不多，很少会有人敢把图给你的，除非是仪器公司的样本图